Технология производства и требования к потребительской таре из стекла. Роль и значение упаковки в маркетинге товаров. Приложение 1 Материалы для изготовления мягких контейнеров.
Приложение 2 Липкие ленты и их характеристики. Send-to-Kindle or Email Please login to your account first Need help? Please read our short guide how to send a book to Kindle. The file will be sent to your email address. It may take up to minutes before you receive it. The file will be sent to your Kindle account.
Люди прокладывают стены фольгой. Зачем!?
It may takes up to minutes before you received it. Please note you need to add our email km0 bookmail. Read more. Post a Review. You can write a book review and share your experiences. Вульф Е. Ершов Н. Free ebooks since В этом способе подходящая композиция включает в себя альгинатный гель, содержащий Streptomyces WYEC Настоящее изобретение описывает выделение ряда штаммов актиномицетов из почвы.
Ряд этих штаммов продемонстрировал свою эффективность в снижении эффектов грибковых патогенов на растения, включая латук, турецкий горох и перец. В частности, настоящее изобретение предлагает выделение штамма, называемого в настоящем документе Streptomyces WYEC Показано, что штамм YEC демонстрирует сильный антагонизм в отношении широкого ряда грибковых фитопатогенов, включая патогены, вызывающие выпревание проростков до и после прорастания, корневую гниль, бурую гниль и белую гниль. В качестве такого антагониста штамм WYEC особенно удобен в качестве биоконтролирующего агента, который можно использовать для защиты растений от инфицирования этими фитопатогенами.
Так, Streptomyces WYEC является полезным для использования в способах снижения чувствительности растений к грибковой инфекции. Благодаря этому, растения, обработанные Streptomyces WYEC , менее подвержены воздействию грибковой инфекции. Грибковая инфекция чувствительных необработанных растений влияет на некоторые ростовые характеристики этих растений. Например, необработанные растения, зараженные грибковыми патогенами, могут демонстрировать значительное снижение высоты, биомассы и урожайности по сравнению с растениями, не зараженными грибковым патогеном.
В предпочтительных вариантах осуществления настоящего изобретения растения, обработанные Streptomyces WYEC и затем зараженные грибковым патогеном, демонстрируют менее выраженные снижения высоты, биомассы и урожайности, чем необработанные растения, зараженные грибковым патогеном. В более предпочтительных вариантах осуществления настоящего изобретения растения, обработанные Streptomyces WYEC и зараженные грибковым патогеном, демонстрируют те же ростовые характеристики, что и необработанные и незараженные растения.
В наиболее предпочтительных вариантах осуществления настоящего изобретения растения, обработанные Streptomyces WYEC и зараженные грибковым патогеном, демонстрируют ростовые характеристики, превосходящие таковые необработанных незараженных растений. Штамм WYEC колонизирует корни растений в присутствии конкуренции микрофлоры ризосферы.
Показано, что штамм WYEC усиливает рост растений латука, выращиваемых на почве, стерилизованной паром, и растений перца, выращиваемых на открытом грунте. Настоящее изобретение также заключает в себе средства производства вегетативных клеток или спор штамма WYEC , подходящих для помещения их в доставочную среду.
Показано, что композиция, включающая вегетативные клетки и споры WYEC и доставочную среду, имеет длительный срок хранения и удобна для доставки штамма WYEC к растениям. Все среды для роста бактерий приготавливали, используя дистиллированную воду, и стерилизовали автоклавированием перед использованием.
Кашированная фольга
Все бактериальные образцы обрабатывались в соответствии со стандартными асептическими лабораторными методиками для поддержания чистоты. Эта серия наливается непосредственно и не используется в качестве покрывающего агара. Перед автоклавированием pH среды доводили до 7,2 е издание каталога ATCC бактерий и бактериофагов. Стерилизацию выполняли обычно путем трехкратного автоклавирования, каждый раз по 90 мин. Иначе мицелий собирали, оставляя культуры стоять до оседания на дно колб Эрленмейера и спор. Надосадок затем декантировали, а концентрированную суспензию мицелия и спор использовали непосредственно для инокуляции в доставочную среду.
Клетки и споры получали также путем роста на твердой среде например, на агаре для споруляции.
Кашированная фольга
Мицелий и споры собирали с агара, соскребая поверхность агара в дистиллированную воду. Эту суспензию спор и мицелия затем непосредственно смешивали с доставочной средой. Грибы белой гнили Phanerochaete chysosporium и Coriolus versicolor; грибы бурой гнили Postia placenta, Caldariomyces fumago и Gloeophyllum trabeum; почвенные грибковые патогены Rhijoctonia solani, Fusarium sambucinctum, Geotrichum candidum и Verticillum dahlliae получили из коллекции культур профессора Don Z.
Crawford факультет бактериологии университета Айдахо, Москва, Айдахо. Pythium irregulare, Phytophthora capsici, Phytophthora cinnamomi, Phytophthora parasitica, Selerotinia cepivorum и Sclerotinia selerotiorum получили из коллекции культур д-ра Wersley chun, Department of Plant soil Entomology science, университет Айдахо, Москва, Айдахо, Fusarium oxysporum получили из коллекции культур д-ра Arthur D. Все культуры выращивали на картофельном декстрозном агаре или кукурузном агаре при 25 o C. Эти штаммы при получении были идентифицированы как "патогены", но повторно на патогенность не проверялись.
Для использования в биологическом исследовании собирали почву, естественно инфицированную Pythium ultimum из нескольких мест района Palouse неподалеку от Москвы, Айдахо. Эту почву собирали из сантиметрового слоя на полях, засеянных и горохом в предыдущие два сезона. Чашки инкубировали при 25 o C и просматривали периодически под препаровальной лупой х 10 с флюоресцентной подсветкой для определения идентичности и количества присутствующих видов Pythium.
Колонии на каждой чашке проверяли спустя 12, 48 и 72 ч после инкубации до установления окончательной популяции. Исследование показало, что популяционная плотность P. Пример 1 Выделение штаммов актиномицетов, демонстрирующих антагонизм в отношении грибковых фитопатогенов.
Актиномицетные штаммы выделяли из четырех связанных с ризосферой и четырех несвязанных с ризосферой почвенных образцов. Эти штаммы затем тестировали на пригодность в качестве ингибиторов грибковых фитопатогенов. Актиномицеты выделяли из 8 различных почв с помощью методики серийного разведения и посева на чашки. Разведения 10 -5 - 10 -7 засевали на различные селективные агаровые среды. Состав этих сред приводился в разделе "Материалы и методы" выше. Изоляты актиномицетов обозначали согласно среде, на которой они были выделены.
В целом эти среды бедны органическим углеродом, который эффективно контролирует эубактериальный и грибковый рост и помогает выделить медленно растущие актиномицеты. Разведения на агаре инкубировали при 25 o C от 4 до 10 дней, чтобы позволить актиномицетам образовать споры, а затем колонии собирали и помещали на чашки с агаром WYE или YCED для очистки.
Чистые колонии переносили с этих чашек на агар YCED или агар CYD скошенные , инкубировали при 25 o C или 37 o C до достижения спорообразования и хранили при 5 o C вплоть до использования. Маточные культуры пересевали каждые 3 - 4 недели. Эти почвы считали не связанными с ризосферой, хотя они и содержали корни растений в разных количествах.
Образцы связанной с ризосферой почвы из 4 мест были приготовлены в основном согласно способу Miller и др. Почва 5 S5 была связана с с корнями пшеницы и была взята с того же поля, что и S2, пшеничного поля на ферме HR1 в Литттлгемптоне, Западный Суссекс. Почва 8 S8 была связана с корнями растений льна и была взята с поля, прилегающего к участку, на котором был взят образец S7, на лугопастбищном угодье в Гастингс Хилл, Саут Даунс, Западный Суссекс. Актиномицеты, выделенные из почв, могут быть разделены на изолированные из почв, связанных с ризосферой, и из почв, не связанных с ризосферой S3, S4, S5 и S8 и S1, S2, S6 и S7 соответственно.
Во всех образцах оценивали влажность почвы путем высушивания 3 г сырой вес образцов три повторности при o C в течение 58 часов и затем повторного взвешивания. После отбора почвы хранили при 4 o C вплоть до использования от 24 до 48 ч. То, что изоляты являлись штаммами актиномицетов, подтверждалось при визуальном исследовании, показавшем, что колонии, образованные этими штаммами, являются типичными колониями актиномицетов твердые и кожистые, с воздушным мицелием, содержавшим споры. Дальнейшее подтверждение идентичности этих штаммов актиномицетам было получено при микроскопии.
Каждый изолят актиномицетов испытывали на способность расти при pH от 5,5 до 8,0.
Стоматологические материалы
Конечное значение pH в каждой среде доводили до ее конечного значения непосредственно перед автоклавированием. Рост культур проверяли спустя 5 - 7 дней инкубации при 25 o C или 37 o C. Как видно из таблицы 1, почвы, связанные с ризосферой, дали почти в два раза больше изолятов, чем почвы, не связанные с ризосферой. Каждый изолят испытывали на рост на агаре CYD при pH от 5,5 до 8,0.
Все изоляты росли в пределах pH от 6,5 до 8,0. Среди изолятов, росших при pH 5,5, рост варьировал от слабого до отличного, в зависимости от изолята. Способность изолятов образовывать споры на агаре CYD определяли также визуально и под микроскопом спустя 5 - 10 дней инкубации. Отобрали 82 изолята по их способности хорошо расти и образовывать много спор на агаре CYD. Для испытания способности изолятов ингибировать рост P. Каждый актиномицет сеяли штрихом на кукурузный агар КА , на одной половине. Культуру инкубировали при 25 o C в течение приблизительно 8 дней или до образования спор.
Агаровый блок из КА 0,5 см 2 , содержавший активно растущий мицелий P. Инкубацию продолжали еще 96 ч. Спустя 48 и 96 ч чашки изучали на предмет ингибирования роста P. На ингибирование указывало то, что рост мицелия P. Результаты этого исследования представлены в таблице II. Остальные изоляты демонстрировали слабый антагонизм. Остальные изоляты демонстрировали или очень слабый антагонизм, или вовсе его не демонстрировали. Культуры, которые четко ингибировали рост P.
Шестьдесят изолятов, которые росли при pH 5,5, также испытывали на антагонизм in vitro по отношению к грибу белой гнили Phanerochaete chrysosporium на кукурузном агаре КА. Тринадцать изолятов демонстрировали определенную степень антагонизма по отношению к грибу белой гнили, как показано в таблице III. Пять из этих культур, которые демонстрировали антагонизм по отношению к P.
Один изолят, WYEC 78, демонстрировал сильный антагонизм только по отношению к двум грибам белой гнили. Для исследования 12 изолятов в отношении их воздействия на всхожесть семян и рост латука Latuca Sativa применяли методику Zynch и др. Для наблюдения за растениями пластиковые горшки диаметром 9 см наполняли смесью для выращивания растений латука и утрамбовывали чашкой Петри. Десять семян латука помещали на поверхность, слегка вдавливали в смесь и слегка покрывали лишней смесью.
Затем горшки помещали на лотки в воду и инкубировали в темноте при 20 - 22 o C, пока прорастание не становилось очевидным приблизительно 3 дня.
Лотки затем переносили в теплицу на капиллярные циновки и содержали при 15 - 25 o C и поливали по потребности. Количество проросших семян в каждом горшке периодически подсчитывали вплоть до го дня. Для растений, обработанных актиномицетами, горшки наполняли смесью, инокулированной спорами определенного актиномицета.
Затем семена латука высаживали, как описано выше, покрывали небольшим количеством инокулированной смеси для выращивания, а затем обрабатывали так же, как контроль.